Protective Effect of Acanthopanax trifoliatus Extract on Rats with Alcoholic Liver Injury
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摘要: 目的：探讨簕菜不同提取物的解酒护肝作用，为簕菜解酒护肝功能食品的研发提供依据。方法：建立白酒灌胃大鼠致酒精肝损伤模型，考察簕菜醇提物和水提物对大鼠酒精耐受、睡眠和醒酒时间的影响，检测大鼠血液中乙醇质量浓度、血清中谷丙转氨酶（ALT）、谷草转氨酶（AST）活性，以及大鼠肝脏组织中乙醇脱氢酶（ADH）、乙醛脱氢酶（ALDH）、超氧化物歧化酶（SOD）活性及谷胱甘肽（GSH）、丙二醛（MDA）含量，切片镜检肝细胞形态变化。结果：与酒精模型组比较，除水提物低剂量组对醉酒时间无显著变化（P>0.05）外，簕菜提取物各剂量组均可显著延长酒精耐受时间，并缩短睡眠、醒酒时间（P<0.05，P<0.01）；簕菜提取物均可极显著降低血清中乙醇含量（P<0.01）；除水提低剂量组AST活力无显著变化外（P>0.05），簕菜提取物各剂量组均能显著抑制酒精引起的大鼠血清ALT和AST活性升高（P<0.05）；极显著增加肝脏组织中ADH、ALDH、SOD活力和GSH含量（P<0.01），降低MDA含量（P<0.01）；肝细胞镜检结果显示，簕菜提取物均能在一定程度上减轻酒精导致的肝细胞变性程度。结论：簕菜醇提物、水提物均具有较好的防醉酒和解酒护肝作用，比较而言，醇提物效果优于水提物。Abstract: Objective: To explore the hepatoprotective effects of different extracts of Acanthopanax trifoliatu, and provide a basis for the research and development of Acanthopanax trifoliatus anti-alcohol and liver-protecting functional foods. Method: Rats were fed by liquor (56% ethanol) to induce acute liver injury models, to study the effects of alcohol extract and water extract of Acanthopanax trifoliatus on the alcohol tolerance, sleep and sober time of rats. The concentration of ethanol in blood and the activites of ALT & AST in serum, activites of ADH, ALDH, SOD and contents of GSH and MDA in rat liver tissue were measured, and the changes of liver cell morphology by slice microscopic examination was observed. Results: Compared with the alcohol model group, except for the low-dose water extract group, there was no significant change in the drunken time (P>0.05), the various doses extract significantly prolonged the alcohol tolerance time and shortened the sleep and sober time (P<0.05, P<0.01); the various doses extract significantly reduced the ethanol mass concentration (P<0.01); except for the low-dose water extract group, there was no significant change in AST activity (P>0.05), all dose groups of extract could significantly inhibit the increase in rat serum ALT and AST activities caused by alcohol (P<0.05); all extracts significantly increased the activity of ADH, ALDH, SOD and GSH content in liver tissues (P<0.01), and reduced the content of MDA in liver tissues (P<0.01). The results of hepatocyte microscopy showed that all extracts could reduce the degree of liver cell degeneration caused by alcohol to a certain extent. Conclusion: Both the alcoholic and water extracts had good anti-alcoholic and liver-protective effects, in comparison, the alcohol extract was slightly better than the water extract.
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簕菜，学名白簕（Acanthopanax trifoliatus（L.）Merr.）又称苦刺（昆明、汕头）、三加皮（邵武、漳州、宁德）、三叶五加（台湾、日本）、鹅掌簕等，为五加科五加属的攀援灌木，多生于林缘、灌丛或山坡。簕菜主要分布于我国华南、西南、华中等地区，在马来西亚、新加坡、印度、日本等地也存在[1]。簕菜不仅作为民间常用草药，也是一种营养和保健价值都很高的野生蔬菜，据《本草纲目》记载，簕菜具有“解百毒”之称，可清热排毒、消暑解渴、解烟酒，具“久服轻身耐老”独特食疗功效[2]。因此是药膳两用蔬菜，是开发功能食品的理想原料，且安全无毒[3-5]。现代医学和食品营养学研究表明，簕菜的化学成分包括黄酮、酚酸、多糖、萜类、皂苷、挥发油等多种类型化合物，具有抗炎镇痛抗疲劳[6-7]、抑菌美白[8]、降血糖[9-10]、抗癌[11-12]、抗氧化[13]等多种活性作用和保健功效[14-15]。
随着饮酒人数及人均酒精消费量的增多，酒精性肝病的发病率逐年上升，无论是美国[16]、芬兰[17]、韩国[18]等发达国家还是我国[19]，酒精性肝病是造成肝硬化的主要病因。酒精性肝病己严重威胁到人类健康，成为全社会关注的一个重要公共卫生问题[20]。广东江门市恩平等地盛产簕菜，十多年前已经开始了人工种植，2015年，“恩平簕菜”入选国家农产品地理标志。据当地居民所言，食用簕菜有解酒和护肝的作用，但目前尚未有簕菜解酒护肝方面相关的研究报道。
本研究建立白酒致大鼠醉酒模型和大鼠急性酒精肝损伤模型，探讨簕菜醇提物、水提物的解酒护肝作用，从防醉酒、加速酒精代谢促解酒、增强机体抗氧化能力和减缓肝组织细胞损伤角度，研究簕菜对大鼠的解酒护肝作用，以期为进一步发掘簕菜的保健功能拓宽思路，也为簕菜解酒护肝保健功能食品的开发奠定理论依据。
1. 材料与方法
1.1 材料与仪器
簕菜茎叶 2020年7月采于广州市增城区中新镇校区东门试验田，种苗由广东恩平雪莊簕菜茶厂基地提供，品种为青梗；56°红星二锅头 北京红星股份有限公司；SPF级雄性SD大鼠 广东省医学实验中心，健康8周龄、体重200±20 g左右，许可证编号：SCXK（粤）2018-0002；苏木精 Solarbio公司；芦丁、没食子酸、齐墩果酸和葡萄糖标准品 上海源叶生物科技有限公司；海王牌金樽片 深圳市海王健康科技发展有限公司，批号20191205；谷丙转氨酶（ALT）、谷草转氨酶（AST）、乙醇脱氢酶（ADH）、乙醛脱氢酶（ALDH）、总超氧化物歧化酶（T-SOD）、微量还原型谷胱甘肽（GSH）、丙二醛（MDA）检测试剂盒 南京建成生物工程研究所。
JJ-2组织粉碎机 常州金坛良友仪器有限公司；723可见分光光度计 上海光学仪器一厂；HWS-24水浴锅 上海一恒科学仪器有限公司；DLSB-5L/10低温冷却液循环泵 巩义市予华仪器有限责任公司；RV3旋转蒸发仪 艾卡（广州）仪器设备有限公司；DHG-9123A电热恒温鼓风干燥箱 上海精其仪器有限公司；H1650R台式高速冷冻离心机 湖南湘仪离心机仪器有限公司；BPC-250F恒温培养箱 上海一恒科学仪器有限公司；Tecan Infinite 200 PRO多功能酶标仪 瑞士Tecan公司；JB-P5包埋机、JB-L5冻台 武汉俊杰电子有限公司；RM2016病理切片机 上海徕卡仪器有限公司；KD-P组织摊片机 浙江省金华市科迪仪器设备有限公司；Donatello脱水机、Giotto染色机 意大利DIAPATH公司；GFL-230烤箱 天津市莱玻璃仪器设备有限公司；ckx53显微镜 日本OLUMPUS公司。
1.2 实验方法
1.2.1 簕菜提取物的制备
1.2.1.1 醇提物制备
称取经60 ℃电热恒温鼓风干燥10 h，组织粉碎机粉碎后过100目筛的簕菜茎叶粉30 g，置于圆底烧瓶中，加入270 mL 80%乙醇，80 ℃水浴回流提取2 h，过滤残渣，重复提取1次，合并滤液，减压浓缩，将浓缩液于电热恒温鼓风干燥箱中进行干燥，得簕菜醇提膏状物。采用分光光度法[21]，以芦丁作标准品，测得簕菜醇提物中总黄酮为470.91 mg/100 g；采用福林酚法，以没食子酸为标准品，测得簕菜醇提物中总酚类为9.253 g/100 g；以齐墩果酸为标准品，测得簕菜醇提取物中总皂苷（以人参皂苷Re计）的含量为910 mg/100 g。
1.2.1.2 水提物制备
称量干燥粉碎后过100目筛的簕菜茎叶粉30 g，置于圆底烧瓶中，加入270 mL蒸馏水，80 ℃水浴回流提取2 h，过滤残渣，重复提取1次，合并滤液，减压浓缩，将浓缩液于电热恒温鼓风干燥箱中进行干燥，得簕菜水提膏状物。参照苯酚-硫酸法[22]，以无水葡萄糖作标准品，测得簕菜水提物粗多糖为105.2 mg/g。
1.2.2 大鼠酒精耐受、睡眠和醒酒时间的测定
取56只大鼠，实验前适应性饲养1周，随机分成8组，每组7只。8个组分别是：酒精模型组、阳性对照组（海王金樽）（0.27 g/kg），簕菜醇提物低剂量组（0.4 g/kg）、中剂量组（0.8 g/kg）和高剂量组（1.6 g/kg），簕菜水提物低剂量（0.4 g/kg）、中剂量（0.8 g/kg）和高剂量组（1.6 g/kg）。
各组大鼠禁食不禁水12 h，海王金樽组、簕菜提取物组分别按0.1 mL/10 g灌胃给予药物和不同浓度簕菜提取物，酒精模型组按照0.1 mL/10 g灌胃给予蒸馏水。30 min后，酒精模型组、阳性对照组、簕菜干预组按13 mL/kg体重用56o白酒灌胃。记录给酒、给药时间，以及大鼠翻正反射消失时间（以大鼠腹部朝上，背部朝下，如果大鼠能够保持该状态>30 s，说明大鼠的翻正反射消失，即醉酒）和翻正反射恢复时间（经过一段时间，大鼠能够翻身），计算酒精耐受时间（翻正反射消失时间−给酒时间）、睡眠时间（翻正反射恢复时间−翻正反射消失时间）、醒酒时间（翻正反射恢复时间−给酒时间）[23]。
1.2.3 大鼠血液中乙醇浓度和ALT、AST活性的测定
另取56只大鼠，分组及给受试物同“1.2.2”项，外加空白对照组，从灌胃白酒开始计时，分别在0.5、1、2、4 h对大鼠进行眼眶取血，每份血样取500 μL于10 mL离心管中，加入500 μL 20%三氯乙酸除蛋白，6000 r/min离心5 min，取上清液，采用酸性重铬酸盐氧化法[24]检测血液中乙醇的质量浓度。4 h眼眶取血，3000 r/min 4 ℃离心5 min，取上清液，按照试剂盒说明书测定ALT和AST活性。
1.2.4 大鼠肝组织中各项指标的测定
另取56只大鼠，分组及给受试物同“1.2.2”项，每天给药1次，连续给药7 d，从给药第1 d起，每次给药后30 min，除正常对照组灌胃等体积蒸馏水外，其余各组动物均按13 mL/kg剂量灌胃56o白酒[25]。于第8 d处死大鼠，取出肝脏，制备肝组织匀浆，5000 r/min离心，取上清液，按照试剂盒说明书测ADH、ALDH和SOD活性及GSH、MDA含量，每只大鼠肝组织包埋1份样本后做HE检测。
1.3 数据处理
采用SPSS 26.0统计软件，实验数据结果采用（
2. 结果与分析
2.1 簕菜提取物对大鼠酒精耐受、睡眠和醒酒时间的影响
由表1可见，与酒精模型组比较，除水提物低剂量组对酒精耐受时间无显著变化（P>0.05）外，阳性对照组、簕菜醇提物各剂量组和簕菜水提物中、高剂量组均可极显著延长酒精耐受时间，并缩短睡眠、醒酒时间（P<0.05，P<0.01）。但醇提物中剂量、高剂量组和水提物中剂量、高剂量组对大鼠酒精耐受、睡眠、醒酒时间的影响不存在量效关系，且簕菜醇提物防醉酒作用优于簕菜水提取物，其原因可能与簕菜醇提物中含有总黄酮、总多酚、总皂苷等多个解酒护肝功能组分有关。
表 1 簕菜提取物对大鼠酒精耐受、睡眠和醒酒时间的影响（组别 剂量（g/kg） 酒精耐受时间（min） 睡眠时间（min） 醒酒时间（min） 酒精模型组 − 19.13±1.74 168.87±4.74 188.00±5.89 阳性对照组 0.27 32.59±2.29## 122.70±7.97## 155.29±6.78## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 20.86±1.64## 147.46±5.40## 168.29±6.32## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 29.03±2.12## 131.03±8.34## 159.29±6.99## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 28.50±2.01## 132.36±5.11## 160.86±5.37## 簕菜水提物低剂量组 0.4 20.06±1.77 151.94±5.32## 172.00±5.63## 簕菜水提物中剂量组 0.8 28.63±2.08## 130.94±4.61## 159.57±5.00## 簕菜水提物高剂量组 1.6 20.53±1.63# 143.47±3.97## 164.00±3.06## 注：与模型组比较，#表示差异显著，P<0.05，##表示差异极显著，P<0.01；表2同。 2.2 簕菜提取物对大鼠血液乙醇含量的影响
如表2所示，与模型组比较，阳性对照组、簕菜醇提物低、中、高剂量组和簕菜水提物低、中、高剂量组在0.5、1、2、4 h时均可极显著降低大鼠血液中乙醇质量浓度（P<0.01）。簕菜提取物各剂量组均能降低大鼠血液中乙醇含量，其机制与大鼠肝脏中促进酒精代谢的ALD和ALDH酶活性升高有关（结果见2.4）。
表 2 簕菜提取物对大鼠血液中乙醇含量的影响（组别 乙醇（g/L） 0.5 h 1 h 2 h 4 h 酒精模型组 4.58±0.08 4.55±0.12 4.52±0.07 4.39±0.21 阳性对照组 3.05±0.03## 2.94±0.08## 2.79±0.09## 2.57±0.06## 簕菜醇提物低剂量组 3.70±0.12## 3.63±0.15## 3.68±0.08## 3.59±0.07## 簕菜醇提物中剂量组 3.40±0.06## 3.36±0.07## 3.40±0.10## 3.27±0.07## 簕菜醇提物高剂量组 3.07±0.08## 2.97±0.11## 2.91±0.10## 2.82±0.06## 簕菜水提物低剂量组 3.87±0.07## 4.05±0.21## 3.82±0.21## 3.75±0.07## 簕菜水提物中剂量组 3.45±0.06## 3.41±0.11## 3.36±0.06## 3.30±0.13## 簕菜水提物高剂量组 3.17±0.13## 3.14±0.13## 3.03±0.10## 2.96±0.08## 2.3 簕菜提取物对大鼠血清ALT和AST活力的影响
由表3可知，与空白组比较，模型组大鼠血清ALT和AST活力极显著升高（P<0.01）；提示本实验采用白酒灌胃复制酒精性肝损伤模型建立成功，说明乙醇灌胃造模已造成大鼠肝细胞线粒体的损害[26]。与模型组比较，水提物低剂量组大鼠血清AST活力无显著变化（P>0.05），水提物中剂量组两者活力显著降低（P<0.05），阳性对照组和簕菜其它各剂量组两者活力极显著降低（P<0.01）。
表 3 簕菜提取物对大鼠血清中ALT和AST活力的影响（组别 剂量（g·kg−1） ALT（U/L） AST（U/L） 空白组 − 12.99±2.84 95.84±4.76 酒精模型组 − 103.58±7.78** 160.27±7.73** 阳性对照组 0.27 13.57±2.32**## 94.24±5.17**## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 50.02±2.85**## 99.38±8.14## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 40.85±3.05**## 79.53±4.40**## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 24.50±2.83**## 71.80±2.36**## 簕菜水提物低剂量组 0.4 84.25±2.66**## 154.00±3.19** 簕菜水提物中剂量组 0.8 44.90±3.26**## 134.62±7.73**# 簕菜水提物高剂量组 1.6 17.21±4.47**## 84.97±5.07**## 注:与空白组比较，*表示差异显著，P<0.05，**表示差异极显著，P<0.01;与模型组比较，#表示差异显著，P<0.05，##表示差异极显著，P<0.01；表4~表5同。 在正常生理状态下，血清中ALT、AST的活性不高，但当肝功能异常以及肝细胞结构破坏，ALT、AST就会由破损处释放入血液，导致血中含量升高，肝中含量降低，临床上将血清中ALT、AST水平作为判断肝损伤程度的“金指标”[27-28]。表3结果表明，簕菜提取物能在一定程度上通过降低大鼠血清中的ALT、AST活力，减少酒精对肝细胞的损伤，起到较好的护肝作用，簕菜醇提物效果优于簕菜水提物，其原因可能是簕菜醇提物中含有总黄酮、总多酚、总皂苷等多个解酒护肝功能组分有关。
2.4 簕菜提取物对大鼠肝组织酒精代谢酶ADH和ALDH活性的影响
表4可见，与空白组比较，模型组大鼠肝组织中ADH、ALDH活性极显著降低（P<0.01）；与模型组比较，阳性对照组、各簕菜提取物干预组均可极显著提高两者活性（P<0.01）。
表 4 簕菜提取物对大鼠肝组织ADH、ALDH活性的影响（组别 剂量（g·kg−1） ADH（U/mg prot） ALDH（U/mg prot） 空白组 − 6.54±0.11 20.05±0.41 酒精模型组 − 4.98±0.08** 15.07±0.48** 阳性对照组 0.27 10.00±0.44**## 29.05±0.45**## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 6.53±0.10## 21.17±0.69*## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 6.94±0.14**## 21.40±0.46**## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 7.05±0.19**## 21.97±0.38**## 簕菜水提物低剂量组 0.4 6.63±0.12## 21.52±0.52**## 簕菜水提物中剂量组 0.8 7.13±0.31**## 22.81±0.43**## 簕菜水提物高剂量组 1.6 7.85±0.15**## 25.79±0.39**## 人体摄入的乙醇约有90%是在肝脏内分解代谢的，乙醇在肝脏内可以被ADH、CAT等代谢系统氧化为乙醛，然后在线粒体中通过ALDH将乙醛催化为乙酸，乙酸以乙酰CoA进入三羧酸循环代谢，分解为二氧化碳和水[29]。因此，检测酒精代谢酶ADH和ALDH是评价药物解酒功能的重要方法[25]。以上结果表明，簕菜醇提物和水提物均能显著提高醉酒大鼠肝脏中酒精代谢酶ADH、ALDH的活性，促进酒精的代谢。
2.5 簕菜提取物对大鼠肝组织GSH、MDA含量和SOD活性的影响
表5显示，与空白组比较，模型组大鼠肝组织GSH含有量、SOD酶活力显著降低（P<0.01），而MDA含量极显著升高（P<0.01），表明酒精诱导肝细胞产生了一定程度的损伤。与模型组比较，阳性对照组、各簕菜提取物干预组中肝组织GSH含有量极显著增加（P<0.01），MDA含量极显著减少（P<0.01）。
表 5 簕菜提取物对大鼠肝组织GSH、MDA含量和SOD活性的影响（组别 剂量（g·kg−1） GSH（μmol/g prot） MDA（μmol/g prot） SOD（U/mg prot） 空白组 − 13.24±0.29 3.96±0.04 312.16±4.37 酒精模型组 − 8.77±0.42** 5.69±0.04** 281.33±4.20** 阳性对照组 0.27 21.08±0.54**## 3.73±0.02**## 357.66±11.85**## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 13.52±0.40 ## 4.37±0.05**## 330.17±3.38**## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 15.35±0.53**## 4.07±0.04**## 336.07±2.53**## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 14.77±0.20**## 3.95±0.03## 323.79±3.00**## 簕菜水提物低剂量组 0.4 13.95±0.45*## 4.23±0.04**## 320.37±2.13**## 簕菜水提物中剂量组 0.8 15.22±0.22**## 4.27±0.03**## 316.25±2.79*## 簕菜水提物高剂量组 1.6 15.13±0.23**## 4.18±0.05**## 311.15±1.69## 正常肝脏内存在SOD、GSH能够清除自由基起到抗氧化的作用，而酒精的摄入引起自由基攻击健康肝细胞，消耗大量的SOD、GSH，同时会产生脂质过氧化物，其中MDA起关键作用，生成大量过氧化物的产物MDA[30]。以上结果表明，簕菜醇提物和水提物均能增强肝损伤大鼠肝脏的抗氧化能力，从而起较好的保肝作用。
2.6 簕菜提取物对大鼠肝脏病理组织学变化的影响
由HE染色结果可以看出，空白对照组大鼠肝细胞形态正常，核结构清晰，肝细胞排列整齐，肝细胞索清晰，肝小叶结构清楚（图1A）；酒精模型组大鼠肝细胞弥漫性气球样变，胞浆疏松化，细胞核固缩，肝细胞灶状坏死（图1B）；阳性对照组大鼠肝细胞索排列整齐，肝窦正常，未见肝细胞坏死区（图1C）；簕菜醇提物低、中、高剂量组大鼠肝细胞肝细胞索排列尚整齐，肝细胞灶状坏死程度较轻（图1D、E、F）；簕菜水提物低、中、高剂量组大鼠肝细胞索排列尚整齐，肝窦正常，肝细胞灶状坏死程度较轻（图1G、H、I）。以上结果表明，海王金樽、簕菜醇提物和水提物均能一定程度减轻酒精对肝细胞损伤，其中海王金樽、高剂量簕菜醇提物、高剂量水提物对酒精性肝损伤的缓解作用较佳。
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图 1 簕菜提取物对急性酒精中毒大鼠肝脏病理形态学变化的影响（HE, 400×）注：A.空白组；B.酒精模型组；C.阳性对照组；D.簕菜醇提低剂量组；E.簕菜醇提中剂量组；F.簕菜醇提高剂量组；G.簕菜水提低剂量组；H.簕菜水提中剂量组；I.簕菜水提高剂量组。Figure 1. Effects of Acanthopanax trifoliatus extract on the pathological changes of liver in rats with acute alcoholism (HE, 400×)3. 结论
研究结果表明，簕菜醇提物和水提物均可显著延长大鼠酒精耐受时间，缩短睡眠、醒酒时间（P<0.05），对延长大鼠酒精耐受时间方面，醇提物的效果优于水提物；簕菜醇提物和水提物均可降低大鼠血液中乙醇质量浓度，提高大鼠肝组织中乙醇代谢酶ADH和ALDH的活性；两种提取物均能显著抑制酒精引起的大鼠血清ALT和AST活性升高（P<0.05），对降低AST活性而言，醇提物的效果优于水提物；两种提取物均可使大鼠肝脏组织GSH含量升高，MDA含量降低，SOD活性增强；两种提取物均可在一定程度上减轻酒精引起的肝细胞变性程度。总体而言，簕菜醇提物的解酒护肝作用优于水提物，这与野葛叶[23]的研究结果相似。已有研究结果表明，对化学性肝损伤有辅助保护功能的保健食品最常用的5种功效成分分别是总黄酮、粗多糖、葛根素、总皂苷、牛磺酸[26]。由此推测，簕菜醇提物的解酒护肝作用优于水提物，可能是簕菜醇提物中含有较高含量总黄酮、总多酚、总皂苷等功效成分，这些成分共同作用，而簕菜水提物的主要功效成分为粗多糖的原因所致。
综上所述，簕菜提取物通过加速乙醇代谢促解酒、增强机体抗氧化能力和减缓肝组织细胞损伤等方面，从而起到较好的解酒护肝作用。本研究为簕菜提取物的合理开发利用提供了理论依据。今后，可对簕菜醇提物、水提物进一步筛选，对其解酒护肝活性组分进行深入研究，明确其有效功能成分，开发簕菜解酒护肝功能食品。
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图 1 簕菜提取物对急性酒精中毒大鼠肝脏病理形态学变化的影响（HE, 400×）
注：A.空白组；B.酒精模型组；C.阳性对照组；D.簕菜醇提低剂量组；E.簕菜醇提中剂量组；F.簕菜醇提高剂量组；G.簕菜水提低剂量组；H.簕菜水提中剂量组；I.簕菜水提高剂量组。
Figure 1. Effects of Acanthopanax trifoliatus extract on the pathological changes of liver in rats with acute alcoholism (HE, 400×)
表 1 簕菜提取物对大鼠酒精耐受、睡眠和醒酒时间的影响（
Table 1 Effects of Acanthopanax trifoliatus extract on the drunkenness, sleep and sobering times of SD rats (
组别 剂量（g/kg） 酒精耐受时间（min） 睡眠时间（min） 醒酒时间（min） 酒精模型组 − 19.13±1.74 168.87±4.74 188.00±5.89 阳性对照组 0.27 32.59±2.29## 122.70±7.97## 155.29±6.78## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 20.86±1.64## 147.46±5.40## 168.29±6.32## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 29.03±2.12## 131.03±8.34## 159.29±6.99## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 28.50±2.01## 132.36±5.11## 160.86±5.37## 簕菜水提物低剂量组 0.4 20.06±1.77 151.94±5.32## 172.00±5.63## 簕菜水提物中剂量组 0.8 28.63±2.08## 130.94±4.61## 159.57±5.00## 簕菜水提物高剂量组 1.6 20.53±1.63# 143.47±3.97## 164.00±3.06## 注：与模型组比较，#表示差异显著，P<0.05，##表示差异极显著，P<0.01；表2同。 
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表 2 簕菜提取物对大鼠血液中乙醇含量的影响（
Table 2 Effects of Acanthopanax trifoliatus extract on the ethanol content in rat blood (
组别 乙醇（g/L） 0.5 h 1 h 2 h 4 h 酒精模型组 4.58±0.08 4.55±0.12 4.52±0.07 4.39±0.21 阳性对照组 3.05±0.03## 2.94±0.08## 2.79±0.09## 2.57±0.06## 簕菜醇提物低剂量组 3.70±0.12## 3.63±0.15## 3.68±0.08## 3.59±0.07## 簕菜醇提物中剂量组 3.40±0.06## 3.36±0.07## 3.40±0.10## 3.27±0.07## 簕菜醇提物高剂量组 3.07±0.08## 2.97±0.11## 2.91±0.10## 2.82±0.06## 簕菜水提物低剂量组 3.87±0.07## 4.05±0.21## 3.82±0.21## 3.75±0.07## 簕菜水提物中剂量组 3.45±0.06## 3.41±0.11## 3.36±0.06## 3.30±0.13## 簕菜水提物高剂量组 3.17±0.13## 3.14±0.13## 3.03±0.10## 2.96±0.08##
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表 3 簕菜提取物对大鼠血清中ALT和AST活力的影响（
Table 3 Effects of Acanthopanax trifoliatus extract on the activities of ALT and AST in rat serum (
组别 剂量（g·kg−1） ALT（U/L） AST（U/L） 空白组 − 12.99±2.84 95.84±4.76 酒精模型组 − 103.58±7.78** 160.27±7.73** 阳性对照组 0.27 13.57±2.32**## 94.24±5.17**## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 50.02±2.85**## 99.38±8.14## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 40.85±3.05**## 79.53±4.40**## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 24.50±2.83**## 71.80±2.36**## 簕菜水提物低剂量组 0.4 84.25±2.66**## 154.00±3.19** 簕菜水提物中剂量组 0.8 44.90±3.26**## 134.62±7.73**# 簕菜水提物高剂量组 1.6 17.21±4.47**## 84.97±5.07**## 注:与空白组比较，*表示差异显著，P<0.05，**表示差异极显著，P<0.01;与模型组比较，#表示差异显著，P<0.05，##表示差异极显著，P<0.01；表4~表5同。
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表 4 簕菜提取物对大鼠肝组织ADH、ALDH活性的影响（
Table 4 Effects of Acanthopanax trifoliatus extract on the activity of ADH, ALDH in rat liver tissue (
组别 剂量（g·kg−1） ADH（U/mg prot） ALDH（U/mg prot） 空白组 − 6.54±0.11 20.05±0.41 酒精模型组 − 4.98±0.08** 15.07±0.48** 阳性对照组 0.27 10.00±0.44**## 29.05±0.45**## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 6.53±0.10## 21.17±0.69*## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 6.94±0.14**## 21.40±0.46**## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 7.05±0.19**## 21.97±0.38**## 簕菜水提物低剂量组 0.4 6.63±0.12## 21.52±0.52**## 簕菜水提物中剂量组 0.8 7.13±0.31**## 22.81±0.43**## 簕菜水提物高剂量组 1.6 7.85±0.15**## 25.79±0.39**##
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表 5 簕菜提取物对大鼠肝组织GSH、MDA含量和SOD活性的影响（
Table 5 Effect of Acanthopanax trifoliatus extract on the contents of GSH, MDA and the activity of SOD in rats liver tissue (
组别 剂量（g·kg−1） GSH（μmol/g prot） MDA（μmol/g prot） SOD（U/mg prot） 空白组 − 13.24±0.29 3.96±0.04 312.16±4.37 酒精模型组 − 8.77±0.42** 5.69±0.04** 281.33±4.20** 阳性对照组 0.27 21.08±0.54**## 3.73±0.02**## 357.66±11.85**## 簕菜醇提物低剂量组 0.4 13.52±0.40 ## 4.37±0.05**## 330.17±3.38**## 簕菜醇提物中剂量组 0.8 15.35±0.53**## 4.07±0.04**## 336.07±2.53**## 簕菜醇提物高剂量组 1.6 14.77±0.20**## 3.95±0.03## 323.79±3.00**## 簕菜水提物低剂量组 0.4 13.95±0.45*## 4.23±0.04**## 320.37±2.13**## 簕菜水提物中剂量组 0.8 15.22±0.22**## 4.27±0.03**## 316.25±2.79*## 簕菜水提物高剂量组 1.6 15.13±0.23**## 4.18±0.05**## 311.15±1.69##
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